ANATOMIE  DES  ARAIGNEES :

VINGT-CINQ  ANS  DE  RECHERCHES  

Spermathèque  des  Telemidae  femelles

1-Introduction

On sait que l’orifice génital primaire ou gonopore des Araignées femelles s’ouvre, comme celui des mâles, au milieu de la fente ou sillon épigastrique marquant la limite entre les 2eme et 3eme somites abdominaux (opisthosomiens).

Très simple chez les seconds, où il ne présente que les différenciations superficielles de l’appareil épigastrique (confere supra), il est également unique et banal chez les femelles de certains groupes “primitifs”, Orthognathes et Araignées dites “Haplogynes” dont font partie les Telemidae, en particulier Telema tenella, leur “chef de file”. L’orifice génital n’y est pas surmonté par une épigyne.

L’orifice génital de Telema s’ouvre dans l’atrium génital… ?, sillon épigastrique devenu largement béant. Il lui fait suite un uterus externus impair et médian reçevant deux oviductes prolongeant eux-mêmes les ovaires (Fig.). A l’atrium… ? est annexée une unique spermathèque (réservoir spermatique).

Il s’agit d’un sac impair, allongé et «extraordinairement volumineux » suivant l’expression de Simon et Fage 1922) qui l’ont décrit pour la première fois dans des préparations éclaircies.

Fig.1- Telema tenella, femelle : coupe longitudinale, un peu oblique pour le prosoma (à droite)

Cx, glande coxale (prosoma) ; I, intestin et diverticules ; M, muscles ; N, ganglions nerveux ; Ov, ovaire ; St, spermathèque à extrêmités fléchées.

Avant que je ne publie deux photos sommaires de la spermathèque chez Telema tenella en signalant qu’elle loge des spermatophores (Lopez,1976 : p.26, fig.6 et 7), il n’existait aucune représentation histologique de cet organe dont les figures étaient purement macroscopiques et à peine esquissées (Fage,1913 ; Simon & Fage,1922).

L’année suivante, j’ai décrit pour la première fois sa structure en détail (Lopez, 1977) et plus tard, son ultrastructure (Lopez,1983b)

Nous avons utilisé comme matériel d'études l’espèce Telema tenella Simon (Telemidae) récoltée dans une grotte des Pyrénées orientales (Can Britxot, près de La Preste), préparée pour l’histologie selon des techniques banales et transportée également vivante au Laboratoire ariégeois (Note 1) pour l’étude ultrastructurale.

2-Structure histologique

La spermathèque de Telema est un organe intra-abdominal médian, allongé selon le grand axe de l’opisthosoma, surmonté par les ovaires et les diverticules intestinaux, reposant sur les glandes à soie les plus antérieures (ampullacées notamment) qu’elle refoule. Subcylindrique et sacciforme, elle mesure environ 300 µm de long et 80 µm de diamètre. Son extrémité antérieure s’ouvre dans l’atrium génital et son extrémité postérieure se termine en un cul de sac plus ou moins incurvé.

Sa cavité, de section plus ou moins arrondie, renferme, chez les femelles fécondées,de la sécrétion et un spermatophore qui s’y love en se repliant plusieurs fois sur lui-même.

Sa paroi comporte plusieurs couches : une couche musculaire externe striée, un épithélium simple et une cuticule interne continue.

Au niveau du corps de la spermathèque, cette cuticule a une épaisseur moyenne de 3 µm ; l’épithélium est assez clair, pourvu de noyaux arrondis, haut de 14 µm sur la face ventrale et de 5 µm sur les faces dorsale et latérales.

Fig.2- Telema : spermathèque,  coupe transversale	Fig.3- Telema : spermathèque, coupe longitudinale partielle	Fig.4- Détail : coussinet
Cc, cuticule ; Ct, coussinet ; D, digitations des spermatozoïdes ; Ec, épithélium du coussinet ; Ep, épithélium du corps de la spermathèque ;  Gs, glande à soie ; I, intestin ; L, lumière de la spermathèque ; M, muscle hors spermathèque ; N, noyau ; S, sécrétion ; Sh, spermatophore. Flèches: muscles de la spermathèque

Fig.5- Telema : spermathèque et ses muscles pariétaux

C, cuticule ; Ep, épithélium ; I, intestin;  L, lumière ; M, muscles pariétaux en coupe tangentielle ; S, sécrétion. Flèches : sections transversales des mêmes muscles

          En revanche, la partie postérieure de la spermathèque a une structure très différente. Elle s’épaissit en un disque fortement convexe, épais de 70 µm et présentant l’aspect d’un “coussinet” à priori glandulaire. A son niveau, la cuticule s’amincit considérablement (1 µm) ; l’épithélium sous-jacent est formé de cellules très hautes, plus sombres, basophiles, striées dans leur partie basale et renfermant des noyaux allongés.

Chez Apneumonella sp., la spermathèque est également impaire, médiane, sous-ovarienne et présente un aspect en « besace » très volumineuse, étendue vers l’avant mais surtout en direction caudale où son extrémité postérieure décrit une courbe à concavité inférieure. Il semble bien exister aussi à ce niveau un épaississement en « coussinet » de l’épithélium pariétal et de la cuticule sus-jacente, jaunâtre et d’aspect rigide. Partout ailleurs la paroi, difficile à reconnaître, est beaucoup plus mince, avec une fine cuticule sinueuse, un épithélium aplati endothéliforme et paraît dépourvue de la tunique musculaire existant chez Telema. (Fig.6 à 8). 

Fig.6-Apneumonella sp.: spermathèque, coupe en long	Fig.7- Autre coupe, oblique	Fig.8- Détail : paroi de la spermathèque et spermatophore
Ed, épiderme ; I, diverticule intestinal ; L, lumière de la spermathèque ; Sh, spermatophore ; Sp, spermatozoïdes empilés ; St, paroi de la spermathèque

L’unique femelle observée s’étant accouplée, la cavité renferme une substance homogène amorphe et surtout, un grand spermatophore jaune-rougeâtre où des gamêtes s’ empilent « comme des comprimés dans leur étui ». Il diffère toutefois de celui de Telema (confere supra) par son aspect cylindrique, avec une cavité axiale régulière et l’absence complète de digitations (Lopez,1978).

3-Ultrastructure

3.1- Paroi de la spermathèque

     Elle est formée par une basale uniforme, finement grenue, assez lâche et sinueuse, par une musculeuse surtout  corporéale,  par une cuticule et par un épithélium  ces deux derniers de caractères différents au niveau du coussinet et du corps.

3.1.1 - Coussinet

3.1.1.a -Epithélium

Cet épithélium est formé par une seule couche de cellules.

Leur pôle apical montre des invagination du plasmalemme en replis parallèles, profonds et étroits découpant dans le cytoplasme des expansions très aplaties, lamellaires, ne montrant jamais les contours arrondis de microvillosités dans les sections transversales. Ces expansions ou microlamelles,orientées selon le grand axe des compartiments cellulaires d’épaisseur uniforme (50 nm environ), sont jointives, forment une bande continue et s’y groupent en faisceaux sinueux, plus ou moins incurvés selon leur longueur (Fig.9). Le cytoplasme ainsi découpé ne renferme pas d’autres organites.

Les deux tiers basaux présentent, de leur côté, un extrême découpage du cytoplasme qui est compartimenté en lanières subparallèles étroites par des replis très profonds du plasmalemme et a donc un aspect lacinié. Ces compartiments semblent accolés les uns aux autres par leurs faces latérales, sans qu’il y ait toutefois à ce niveau des jonctions particulières (scalariformes) pour les solidariser. Leur extrémité libre, plus ou moins massuée, renferme parfois une densification du hyaloplasme.

Les pôles basaux ainsi conformés rappellent ceux des podocytes.

Le noyau est situé dans la moitié basale de la cellule dont il occupe l’un des compartiments, très élargi à son niveau. Allongé et de contours irréguliers, il renferme de la chromatine en petites mottes et un nucléole volumineux.

Le chondriome est représenté, dans les deux tiers basaux des cellules par de grosses mitochondries plus ou moins ovoïdes, pourvues de crêtes parallèles très serrées et orientées selon le grand axe des compartiments. En revanche, dans le tiers apical, elles sont petites, flexueuses et orientées diversement (Fig.9).

Des organites considérés comme grains de sécrétion sont peu nombreux et situés parfois au contact des mitochondries ; ils ont un contenu homogène et de faible densité.

Le hyaloplasme renferme également des ribosomes libres ou groupés en polysomes.

La cohésion des cellules épithéliales est assurée, sur les faces latérales, par des jonctions septées que des desmosomes zonaires prolongent vers l’apex. En revanche, les compartiments des pôles basaux laciniés ne sont pas réunies par des jonctions particulières contrairement à la glande coxale sensu-stricto qui possède à ce niveau des jonctions s-1calariformes très développées.

Fig.9- Telema tenella : vue trés partielle du coussinet de la spermathèque. M.E.T.

C, cuticule ; L, lumière ; Ml, microlamelles ; Mt, mitochondries apicales ; P, replis du plasmalemme ; flèche : orifice cuticulaire.

3.1.1.b -Cuticule du “ coussinet ”

            Elle est uniquement épicuticulaire, forme une couche dense aux électrons et a une épaisseur moyenne de 250 nm (Fig. 9). Sa face interne est lisse tout au long de la lumière tandis que sa face externe présente une succession de crêtes plus ou moins arrondies, parfois bifides et se moulant étroitement sur les expansions lamellaires sous-jacentes.

            Elle est constituée d'une épicuticule externe, d'une épicuticule interne et est traversée par des pores en forme d'entonnoir (Fig. ). Ces pores sont en effet plus larges du côté externe que de celui de la lumière ; ils y permettent vraisemblablement le passage de substances sécrétées par les cellules épithéliales.

3.1.2- Corps de la spermathèque

3.1.2.a- Epithélium

Il est formé par des cellules jointives plus ou moins hautes.
            Leur pôle basal n’est que légèrement découpé. L’apex est garni de villosités courtes et diversement orientées.
           Le noyau est plus ou moins aplati et pourvu de mottes chromatiniennes périphériques.
            Le cytoplasme, assez dense aux électrons, contient de petites mitochondries et une grande quantité de corps pseudo-myéliniques (Fig. ).
           Le passage de cet épithélium à celui du coussinet est assez brusque. Quelques cellules seulement présentent des caractères mixtes.

3.1.2.b- Cuticule
Elle diffère de celle du coussinet glandulaire par l'absence complète de pores, sa minceur, une plus grande régularité et l'adjonction d'une endocuticule. Très claire aux électrons, elle comporte plusieurs assises avec un  petit nombre de fibrilles en arceaux et présente quelques invaginations profondes, étroites, parfois ramifiées..

3.1.2.c- Espace sous-cuticulaire
Les cellules épithéliales sont surmontées par un large espace les séparant de la cuticule sus-jacente. Il renferme des corps pseudo-myéliniques libérés, , un matériel finement grenu  et des masses irrégulières plus denses, dépourvues de membrane (Fig.  ).

3.1.2.d-Musculeuse

La musculeuse est formée par une ou deux couches de fibres striées. Ces cellules adoptent une disposition annulaire au niveau du corps de la spermathèque, plus variable au niveau du coussinet où elles se raréfient. Entourées par des expansions de la lame basale, elles renferment un noyau marginal asserz irrégulier, quelques mitochondries et des myofibrilles longitudinales. Ces dernières convergent parfois vers des densifications osmiophiles  du myoplasme aux points de contact avec la basale (Fig.  ).

3.2-Contenu de la spermathèque

Chez les femelles fécondées, la lumière du corps de la spermathèque contient un spermatophore baignant dans du matériel amorphe.

Ce spermatophore est replié sur lui-même, agencement remarquable pouvant être déduit des coupes histologiques.

A partir d’une extrémité, il se reploie de 3 à 5 fois en « épingles à cheveux » successives, les replis ébauchant une symétrie rayonnée avec 6 sections en coupe transversale. De plus, ils s’opposent alternativement, face ventrale (ou digitée) contre face ventrale, et face latérale contre face latérale, les deux extrémités se trouvant ainsi du même côté (Fig.). Une telle disposition permet au spermatophore d’occuper un minimum de place dans la spermathèque malgré son volume relativement considérable. Il est vraisemblable qu’elle existe aussi déjà dans le bulbe copulateur du mâle  avant l’éjaculation.

Comme dans les coupes histologiques où son aspect général demeurait inchangé, le spermatophore conserve son ultrastructure fondamentale caractéristique . 3 couches superposées forment toujours sa paroi et ne présentent que des modifications minimes  : la couche interne paracristalline s’est un peu épaissie  ; les alvéoles de la couche moyenne se sont élargies ; les étroits piliers parallèles de la couche externe semblent s’être inclinés à 45° sur le grand axe du spermatophore (Fig. ). Quant aux spermatozoïdes, ils sont moins condensés, de contour plus régulier, et présentent une coque moins nette, vermiculée dans la digitation.

4 -Commentaires

Au point de vue anatomique, la spermathèque est remarquable par son volume, si l’on tient compte de la très petite taille (1,5 mm) d’une femelle de Telema tenella. Ses dimensions sont en rapport avec celles du spermatophore, introduit dans sa cavité lors de la copulation et pouvant se replier jusqu’à 5 fois sur lui-même en «épingles à cheveux» successives pour s’y loger tout entier (Lopez,1980a).

La spermathèque se présente comme une simple invagination de l’épiderme au niveau de l’atrium génital. Sa structure est très simple si on la compare à celle d’autres Araignées «Labidognathes» considérées comme plus évoluées, Dysderidae comprises…

L’étude ultrastructurale confirme que le coussinet postérieur est bien de nature glandulaire et qu’il s’agit d’une glande anatomiquement définie. Son épithélium est formé de cellules sécrétrices toutes semblables, chacune d’elles pouvant être assimilée à une glandule tégumentaire du type 1 tel queNoirot et Quennedey (1974,1991) l’ont défini chez les Insectes. Au même type sont d’ailleurs rattachées les cellules de la glande rostrale, des glandes péribuccales en «coussinet» (confere supra) ainsi que celles des conduits de copulation (Araneus diadematus : Kovoor,1981).

Toutefois, dans le cas présent, les pôles basaux des adénocytes sont extrêmement laciniés et les villosités apicales classiques sont remplacées par de curieuses expansions aplaties formant une bordure microlamellaire très curieuse.

Le découpage basal des cellules évoque celui qui a été noté par Blest et Taylor (1977) chez d’autres Araignées du genre Mynoglenes dans leur prétendue « glande clypéale ». Elle n’a en fait aucun rapport avec le véritable organe du même nom (confere supra), se rencontre dans les deux sexes et aurait plutôt du être appelée « glande latéro-sousoculaire » (Fig. ). De plus, ses cellules possèdent des canalicules excréteurs individuels et ont des compartiments basaux plus irréguliers, renfermant peu de mitochondries.

La laciniure basale et la richesse du chondriome associé dans le coussinet de la spermathèque sont donc beaucoup plus proches du labyrinthe de la glande coxale, ce dernier possédant toutefois des jonctions scalariformes qui font ici défaut (confere supra).

La bordure apicale microlamellaire est un caractère morphologique très inhabituel découvert dans les tubes de Malpighi et l’ intestin d’Insectes Homoptères (Smith & Littau,1960), Diptères (Waterhouse & Wright,1960) ainsi que chez les Arachnides, dans les tubes excréteurs de l’Acarien Macrocheles muscaedomesticae (Coons & Axtell,1971). Une ultrastructure un peu voisine semble d’ailleurs se retrouver dans l’ordre des Araignées, où des microvilli apicales « foliacées » caractérisent la glande labiosternale des Theridiosomatidae (confere supra).

Au point de vue fonctionnel, il doit se produire des échanges extrêmement actifs au niveau du pôle basal comme les mitochondries en témoignent par leur nombre, leur taille et leur association avec ses replis membranaires.

La sécrétion des cellules du coussinet gagne vraisemblablement la lumière de la spermathèque au travers des pertuis en entonnoir ajourant la cuticule. Son rôle ne peut guère être précisé mais pourrait bien être lié à l’existence du spermatophore : nutrition des gamètes mâles, lyse de leur coque d’enkystement et de la paroi spermatophorique, entrainement mécanique vers les ovules à féconder pendant la ponte.

Les déplacements du spermatophore lui même pourraient être facilités par les contractions de la musculeuse, ainsi que par les modifications structurales de la couche externe dont les piliers (Lopez,1980a ; Lopez,1980b) subissent une inclinaison (Fig. ) après qu’il ait été introduit dans la spermathèque (Lopez,1983a : fig.5a,5b ; Lopez,1983b).

Au point de vue systématique, il est probable qu’une même structure de la spermathèque est commune à toutes les Araignées Telemidae si l’on en juge par la description qu’en ont fait divers auteurs (Saaristo,1978 ; Brignoli,1978,1980 ; Baert,1980) d’après les préparations éclaircies de genres différents (Seychellia, Cangoderces, Usofila, Jocquella).

Au point de vue phylogénique, la structure de la spermathèque distingue nettement Telema tenella, Apneumonella et probablement aussi toutes les autres Telemidae, des Leptonetidae (Fig. ). De même, elle ne paraît pas autoriser un rapprochement avec les Dysderidae bien qu’il existe quelques ressemblances dans les glandes coxales (Lopez,1983d) et séricigènes (Lopez,1983c).

Bibliographie

Baert,L.,1980.- Bull.Br.Arachnol.Soc.,5,1,p.16-19.

Blest,A.D. & H.H.Taylor,1977.- J.Zool.Lond.,183, p.473-493.

Brignoli,P-M., 1978.- Rev.Suisse Zool., 85,1, p. 111-114.

Brignoli,P-M., 1980.- Rev.Suisse Zool., 87,2, p. 605-609.

Coons,L.B. & R.C.Axtell,1971.- J.Morph.,133, p.319-338.

Fage,L., 1913.- Arch.Zool.exp.gen.,10 (Biospeologica ,29), p.479-576.

Kovoor,J., 1981.- Atti.Soc.Tosc.Sci.nat.,Mem.ser.B,788, suplt.p.1-15.

Lopez,A,1976 (avec H.Salvayre).- Bull.Soc.Et.Sci.nat.Béziers, N.S., IV, Vol.45, 1976, p.17-26.

Lopez,A.,1977.- Bull.soc.zool.France, 102, n° 3, p.261-266.

Lopez,A.,1978 (avec R.Legendre).- Bull.soc.zool.France, 103, n° 1, p.35-41.

Lopez,A.,1980a (avec C.Juberthie).- C.R.Veme Coll.Arach.,Sept.1979, Barcelona, 1980, p.111-117.

Lopez,A.,1980b (avec C.Juberthie & J.Kovoor)– Intern.Journ.Invert.reprod., 3, p.181-191.

Lopez,A.,1983a.- Bull.Soc.Et.Sci.nat.Béziers, N.S., IX, Vol.50, 1982-1983, p.20-28.

Lopez,A.,1983b (avec L.Juberthie-Jupeau).- Mém.Biospéol, X, p. 413-418.

Lopez,A.,1983c (avec J.Kovoor).- Mém.Biospéol, X, p. 419-425.

Lopez,A., 1983d (avec L.Juberthie-Jupeau & J.C.Bonaric).- Mém.Biospéol, X, p.433-437.

Noirot,C. & A. Quennedey.,1974.- Ann.Rev.Ent., 169, p.61-80.

Noirot,C. & A. Quennedey., 1991.- Annls Soc.ent.Fr. (N.S.), 1991, 27 (2), p.123-128.

Saaristo,M.I.,1978.- Ann.Zool.Fenn.,15, p.99-126.

Simon, E., 1882.- Etudes arachnologiques, 13 eme mémoire. Ann.Soc.ent.France (6) 2, p.204-205

Simon, E. & L.Fage,1922.- Arch.Zool.exper., 60, (Biospeologica 46), p.523-555.

Smith, D.S. & V.C.Littau,1960.- J.Biophys.Biochem.Cytol.,8, p.103-133.

Waterhouse, D.F. & M.Wright, 1960.- J.Insect Physiol.,5, p.230-239.